検体の取得から診断値までの体系的な比較
Aug 27, 2026
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I. 微小解剖学的基礎と検査原則
1.1 骨髄の組織学的構成
骨髄は人体の中で最大かつ最も活動的な造血器官であり、総重量の約 4% ~ 5% を占め、総容積は約 2.6 ~ 4.0 kg (体重 70 kg の成人の場合) です。組織学的観点から見ると、骨髄は 2 つの主要な構成要素で構成されています。
造血実質細胞: これらには、造血幹細胞 (HSC)、さまざまな系統の前駆細胞、およびさまざまな分化段階の成熟血液細胞が含まれます。生理学的条件下では、造血幹細胞は非対称分裂を起こして自己複製を維持しながら、骨髄系(赤血球、顆粒球-単球、巨核球)およびリンパ系(T-細胞、B-細胞、NK-細胞)経路に沿って分化します。-
造血微環境 (HME):網様細胞、血管内皮細胞、線維芽細胞、脂肪細胞、細胞外マトリックス(コラーゲン線維、フィブロネクチン、ラミニンなど)、神経終末から構成されます。この微小環境はサイトカイン(例、SCF、TPO、G-CSF、IL-3)を分泌し、HSCのホーミング、増殖、分化を細かく調節するための物理的な足場を提供します。
骨髄腔内の血管系は次のような特徴があります。正弦波- 内皮間隙が広がった薄壁の毛細血管のネットワーク。-成熟した血液細胞は類洞内皮を通過して末梢循環に入ります。これらの類洞の構造的完全性は、骨髄穿刺中に吸引された標本が希釈されるかどうかに直接影響し、生検標本における血管新生や異常浸潤を評価するための重要な形態学的指標としても機能します。
1.2 赤色骨髄と黄色骨髄間の動的変換
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骨髄の種類 |
構成 |
分布 |
機能ステータス |
|---|---|---|---|
|
赤い骨髄 |
造血細胞 ~40% ~ 60%、脂肪細胞 ~30% ~ 50% |
乳児期にはすべての骨に分布します。成人では、頭蓋骨、胸骨、肋骨、脊椎、骨盤、大腿骨/上腕骨の近位端に集中 |
活発な造血;あらゆる種類の成熟した血球を継続的に生成します |
|
黄色い骨髄 |
Adipocytes predominate (>70%);造血細胞が非常に少ない |
成人の長骨骨幹(例、大腿骨遠位骨幹) |
静止状態だが、重度の貧血、骨髄浸潤、骨髄壊死などの病的状態では赤色骨髄への逆変換(「黄色-から-)」が起こる可能性がある |
臨床的相関関係: 骨髄生検切片では、HE 染色により、赤色骨髄領域(細胞密度が高く、濃く染色されている)と黄色骨髄領域(脂肪空胞、薄く染色されている)を視覚的に直接区別できます。-この比率の変化(例、骨髄細胞性の等級付け)は、造血予備力を評価するための重要な指標です。骨髄吸引塗抹標本では、この空間情報は得られません。
1.3 2 つの検査方法の背後にある生物学的理論的根拠
骨髄穿刺と骨髄生検の診断価値が異なる理由は、根本的に異なることにあります。彼らが「見る」骨髄の寸法:
骨髄穿刺が得られます遊離細胞の解離懸濁液- 利点は、個々の細胞の高解像度の形態学的観察と細胞化学的染色です。-欠点は、組織内の細胞の元の空間関係が失われることです (「誰が誰の隣にいるか」の情報が失われます)。
骨髄生検が得られます三次元組織切片-- 細胞と微小環境の間の空間的関係 (「近隣効果」) は保存されますが、固定と切片化により細胞の微細な詳細がある程度失われます。
両者の関係は次のようになります「バラバラになったレゴブロックの山を見ている」(願望) 対「完全に組み立てられたレゴモデルを見ている」(生検) - 前者では、各レンガの形状と色を明確に検査できます。後者は全体の構造と組み立てパターンを明らかにします。臨床診断においては、どちらも必須ではありません。
II.操作機器の構造の違い
2.1 骨髄吸引針の設計原理
臨床現場で最も一般的に使用される吸引針は次のとおりです。ジャムシディ-変更されましたまたはロッシュ-タイプ針。そのコアコンポーネントには次のものが含まれます。
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成分 |
関数 |
|---|---|
|
針カニューレ(外針) |
皮質骨を貫通するための、斜めまたはピラミッド状の先端を備えた中空の金属管。外径は通常 14 ~ 16 G (約 1.6 ~ 2.1 mm) |
|
スタイレット(インナーコア) |
カニューレの内径と一致する固体金属ロッド。挿入すると、針先端のベベルが密閉され、挿入中に骨の破片や組織が内腔に詰まるのを防ぎます。 |
|
デプスストップ(固定器) |
あらかじめ設定された挿入深さにカニューレに沿ってロックできるスライド リングにより、反対側の皮質板を貫通するのを防ぎます (特に胸骨穿刺の場合に重要です)。 |
|
針ハブとコネクタ |
吸引中に注射器を取り付けるためのカニューレ尾部の端子接続 |
動作原理: 針が皮質を貫通して髄腔に入った後、スタイレットを取り外し、乾いた注射器を取り付けて陰圧を発生させ、骨髄液を注射器内に引き込みます。陰圧の大きさと継続時間は、標本品質に直接影響します - 過剰な陰圧や長時間の吸引により、正弦波状の血液が大量に流入し、「希釈アーチファクト」が生じます。
2.2 骨髄生検針の設計原理
骨髄生検針は、明らかに異なる設計理念を持つ 2 つの主要なカテゴリに分類されます。
(1) トレフィン・切断針
代表者は、ジャムシディ生検針(現在は国際標準):
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成分 |
関数 |
|---|---|
|
アウターカニューレ(トロカール) |
先端に鋭い刃先を備えた金属管。外径は通常 11 ~ 13 G (約 2.4 ~ 3.0 mm) |
|
インナースタイレット |
先端が外側のカニューレよりわずかに長い中実のロッド。骨髄に浸透し、組織の詰まりを防ぐために最初に挿入されます。 |
|
ハンドル |
T{0}} 形または弓形-で両手で回転力を加えることができます。- |
|
深さのマーキング |
深さを視覚的に読み取るためのカニューレ表面の目盛り |
動作原理: 内側スタイレットと外側カニューレが一緒に回転して骨髄内に所定の深さまで入ります。次いで、スタイレットが引き抜かれ、外側カニューレがさらに回転されて、骨髄組織の短い円筒形のコアが切断され、その後、カニューレとともに引き抜かれる。
(2) ロータリーソーニードル (生検パンチ)
代表者は、イスラム教の生検針高速回転切断機構を使用しています。-これらの針は、今日の臨床現場ではあまり使用されていませんが、特定の部位 (胸骨生検など) に使用されることがあります。
2.3 針径の違いの生物学的および臨床的意義
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比較 |
吸引針 (14 ~ 16 G) |
生検針 (11 ~ 13 G) |
|---|---|---|
|
内径 |
~1.2~1.6mm |
~2.0~2.8mm |
|
組織外傷 |
最小限。穿刺部位は実質的に縫合を必要としない |
わずかに大きいですが、腸骨稜生検も縫合を必要としません |
|
痛みのレベル |
軽度(強化された筋肉内注射に相当) |
やや目立ちますが、十分な局所麻酔があれば耐えられます。 |
|
検体量 |
0.2~0.5mlの液体 |
長さ 1.5 ~ 2.0 cm の組織コア |
|
その後の手続きへの影響 |
ほとんどない |
同じ穿刺部位を短期間に再生検しないでください(手順の間に 4~6 週間以上の間隔をあけてください){0}} |
テクニカルノート: 生検針の太い設計は、単に「より多くの材料を採取する」ことを目的としたものではありません - その主な目的は、切片作成後に十分な細胞数と空間構造を維持するのに十分な大きさの組織コアの直径を確保することです。芯が細すぎると(<1.5 mm diameter), it is highly prone to fragmentation or distortion during decalcification and sectioning, severely compromising diagnostic value.
Ⅲ.標本の取得と処理における根本的な違い
3.1 骨髄吸引: 液体検体の細胞学的分析の全ワークフロー
(1) 技術的な目指すべきポイント
シリンジの選択: A 乾燥10mlシリンジが推奨されます。乾燥は非常に重要です - 微量の水分でも凝固カスケードを活性化し、塗抹前に骨髄サンプルが凝固してしまい、壊滅的な「細胞が見えない」状況が発生する可能性があります。
吸引量制御: 0.2~0.5mlが最適。少なすぎます(<0.1 ml) may result in insufficient cell density on the smear; too much (>1.0 ml) は過剰な正弦波血液流入と末梢血希釈を引き起こします - 塗抹標本には成熟したリンパ球と好中球が豊富に示されますが、芽球のパーセンテージは下方に「希釈」され、簡単に偽陰性または疾患負担の過小評価.
吸引速度:そうあるべきですゆっくりと着実に過度の瞬間的な負圧を避けるため。
(2) 標準化された塗抹標本作製ワークフロー
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ステップ |
運用詳細 |
品質管理のポイント |
|---|---|---|
|
アプリケーションをドロップする |
吸引後はすぐにスタイレットを再挿入します。ラベルを貼ったスライドの一方の端から約 1 cm のところに、骨髄液を 1 滴手早く置きます。- |
吸引から塗抹完了までは以内でなければなりません30~60秒細胞の自己溶解や凝固を防ぐため |
|
広がる |
アシスタントは別のスライドを 30 度から 45 度の角度でスプレッダーとして使用し、ドロップに軽く触れて一定の速度で前に押します。 |
スプレッダーの速度はスミアの厚さを決定します。より速く=より薄くなります。遅い=厚い |
|
スライドの数 |
定期的に 5 ~ 8 個の塗抹標本を作成します。細胞化学的染色 (POX、PAS、NSE など) が予定されている場合は、さらに 3 ~ 5 を準備します。 |
不十分なスライドは最も一般的な臨床問題の 1 つです |
|
乾燥 |
自然乾燥させます。-決して加熱乾燥させないでください-(細胞の収縮や歪みの原因となります) |
乾燥後すぐに加工に出す |
(3) 染色システム
日常的な染色: ライト-ギムザ複合染色では、核クロマチン パターン、核小体、細胞質顆粒、液胞がはっきりと表示されます。
細胞化学的染色: 急性白血病の FAB 分類に重要なペルオキシダーゼ (POX)、スーダン ブラック B (SBB)、非特異的エステラーゼ (NSE)、特異的エステラーゼ (CE)、過ヨウ素酸-シッフ (PAS)、酸性ホスファターゼ (ACP) - が含まれます。
鉄汚れ: 細胞内および細胞外の鉄を評価するための骨髄塗抹標本のプルシアンブルー染色 - は、鉄欠乏性貧血および慢性疾患の貧血を診断するためのゴールドスタンダードです。
3.2 骨髄生検: 固形標本組織病理学的分析の全ワークフロー
(1) 組織採取の技術的ポイント
優先サイト: 上後腸骨棘- 薄い皮質、豊富な骨髄、安全な操作、最適なコアの長さと品質。
挿入角度: 骨の表面に対して垂直に、回転運動をしながら進めます。
取得深度: 通常は 1.5 ~ 2.0 cm まで進めます。より深く浸透すると、診断情報が大幅に増加することなく、痛みが増加します。
コアの回収: 回転切断後、アウターカニューレをコアごとゆっくりと引き抜きます。小さな灰白色の組織片(およそゴマ-から米-粒-サイズ)が針の先端に見えます。
(2) 標本固定の重要なステップ
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ステップ |
運用詳細 |
なぜそれが重要なのか |
|---|---|---|
|
即時固定 |
芯を置きますすぐに10%中性緩衝ホルマリンに溶解 |
固定が遅れると細胞の自己溶解や核の断片化が起こり、形態学的評価が著しく損なわれます。 |
|
固定時間 |
室温4~24時間(コアサイズに応じて) |
-固定不足 → 脱灰中の組織崩壊。過剰な固定→抗原マスキング、免疫組織化学の障害 |
|
固定液の量 |
固定剤の量は次のとおりです。10~20回組織の体積 |
完全な浸透を保証します |
(3) 脱灰と包埋
骨髄生検における最もユニークかつ困難な前処理ステップは、{0}脱灰:
原理: 骨組織には豊富なヒドロキシアパタイト結晶が含まれており、組織をスライス可能な状態に柔らかくするには、酸性脱灰剤 (例: EDTA、ギ酸-ホルムアルデヒド混合物) によって溶解する必要があります。
方法の選択:
EDTA脱灰(推奨): キレート作用は穏やかで、組織抗原と DNA をよく保存し、下流の IHC および分子検査に適しています。欠点は期間が長いこと(3 ~ 7 日間)です。
酸性急速脱灰(例: 硝酸法): 迅速 (数時間) ですが、抗原と核酸に重大な損傷を与え、下流のアッセイに影響を与える可能性があります。
パラフィン包埋: 脱灰後、組織は勾配アルコール脱水、キシレン除去、パラフィン浸潤、およびパラフィン ブロックへの包埋を受けます。
(4) 切片化と染色
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汚れの種類 |
具体的な方法 |
診断用途 |
|---|---|---|
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日常的な汚れ |
HE染色、ギムザ染色 |
細胞密度、脂肪比率、異常な細胞浸潤パターンを評価します |
|
線維化の評価 |
ゴモリシルバーステイン(レチクリン)、マッソントリクローム |
骨髄線維症のグレード (MF-0 ~ MF-3) |
|
免疫組織化学 (IHC) |
CD34、CD117、MPO、CD3、CD20、CD138など |
異常な細胞系統を特定し、最小限の残存病変を評価します |
|
特殊な汚れ |
コンゴレッド(アミロイドーシス)、PAS(真菌/ムチン) |
特定の病態を確認する |
IV.診断上の利点の詳細な比較-
4.1 骨髄穿刺の独自の利点 - 詳細な分析
(1) 単一細胞解像度の形態診断
骨髄塗抹標本の最大の強みは、各セルは「離れて広がっている」- 優れた展開技術を使用すると、細胞は重なり合うことなく単一の単層に配置されます。これにより、病理学者は油浸下 (1000 倍) ですべての細胞を以下について検査できるようになります。
核クロマチンの粗さと分布パターン
核小体の数、大きさ、突出度
細胞質の色、顆粒の種類(アズール性、好中性、好酸性など)
細胞の大きさと形態的規則性
これ「セル-レベル」の解像度厚さ 3 ~ 5 μm の組織切片の生検切片 - では、核が垂直に重なり合うことが多く、細胞質の詳細が圧縮されており、個々の細胞を正確に分類することは非常に困難です。
(2) 巨核球の詳細な評価
巨核球は骨髄の中で最も大きな細胞です (直径 50 ~ 100 μm まで)。形態学的異常は、いくつかの疾患の診断上重要です。
|
異常 |
形態学的特徴 |
関連疾患 |
|---|---|---|
|
巨大な形態 |
Cell body >100 μm, excessive lobulation (>10 ローブ) |
巨赤芽球性貧血(B12/葉酸欠乏症) |
|
巨赤芽球様の変化 |
細胞体は拡大しているが、小葉形成は限られている。核の成熟は細胞質より遅れる |
MDS、巨赤芽球性貧血 |
|
微小巨核球 |
小さな細胞体(リンパ球に相当)、分葉のない、または最小限の分葉のある核 |
MDS(特に5q-症候群)、再発性遺伝子異常を伴うAML |
塗抹標本では、これらの異常はすぐにわかります。生検切片では、巨核球は他の細胞によって隠されていることが多く、切片の厚さの制限により、その完全な形態を評価することが困難です。
(3) 細胞化学的染色の定量値
骨髄塗抹標本の細胞化学的染色結果は、正確に定量化された- たとえば、POX 陽性率はパーセンテージ (例: 「爆発性 POX 陽性率 85%」) で表され、これは AML と ALL を区別するための中核基準です。生検切片では、酵素活性と色原体の沈着が固定と脱灰の影響を受け、正確な数値が得られず、半定量的な結果 (「弱陽性」または「局所陽性」) のみが得られます。-
4.2 骨髄生検の独自の利点 - の詳細な分析
(1) 造血組織と脂肪組織の空間的比率
生検切片では、赤色骨髄 (造血領域) と黄色骨髄 (脂肪領域) の比率が次のようになります。直接視覚化および定量化。正常な成人の骨髄には、約 30% ~ 50% の造血組織と 50% ~ 70% の脂肪が含まれています。この比率の変化は、診断に重大な影響を及ぼします。
|
病理学的状態 |
赤骨髄と黄色骨髄の比率の変化 |
臨床的意義 |
|---|---|---|
|
再生不良性貧血 |
赤色骨髄が大幅に減少 (<10%), nearly entirely replaced by fat |
再生不良性貧血を確認するための中心的な基準 |
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骨髄異形成症候群 |
赤い骨髄が増加 (50% ~ 80%)、異常な局在化 (ALIP 現象) を伴う |
MDS診断をサポート |
|
骨髄線維症 |
赤い骨髄が緻密な線維組織に置き換わる |
PMF診断に必要 |
|
白血病の浸潤 |
赤色骨髄はほぼ完全に白血病細胞の単形集団で占められている |
腫瘍量を評価します |
(2) 有核細胞密度の正確な評価
生検切片では以下の計算が可能平方ミリメートルあたりの有核細胞数またはの使用半定量的な細胞性評価システム(5層):
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細胞性グレード |
有核細胞の割合 |
対応する病理学的状態 |
|---|---|---|
|
極度の細胞過多 |
>90% |
CML 急性転化期、一部の AML |
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顕著な過細胞性 |
70%–90% |
CML慢性期、PV、ET |
|
セルラー(通常) |
30%–70% |
正常または軽度の異常 |
|
低細胞性 |
10%–30% |
一部のデータシート、治療後の状態- |
|
重度の低細胞性 |
<10% |
重度の再生不良性貧血 |
この生検に基づく細胞性評価は、塗抹標本評価よりも客観的です。-塗抹標本は「吸引されたごく一部」の細胞密度のみを反映しますが、生検では骨髄腔全体の「完全なパノラマ」が明らかになります。
(3) 造血状態を真に反映する正弦波希釈の回避 -
吸引中、陰圧により骨髄液とともに正弦波状の血液が必然的に引き込まれ、ある程度の希釈が生じます。経験豊富なオペレーターは吸引量を制御することでこれを最小限に抑えることができますが、完全に排除することはできない。対照的に、生検組織コアは正弦波希釈を受けません - 正弦波血液は固定中に洗い流され、切片上に見られる細胞は専ら実質骨髄細胞です。これは評価において特に重要です低細胞性MDSまたは初期骨髄線維症.
(4) 特定の疾患の診断価値
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病気 |
生検の診断上の役割 |
仕組みの説明 |
|---|---|---|
|
原発性骨髄線維症 (PMF) |
診断のゴールドスタンダード |
塗抹標本では線維化の程度を示すことはできません。生検でのレチクリン染色によりMFグレードが確認される |
|
有毛細胞白血病 (HCL) |
特徴診断 |
生検により、「目玉焼き」のような毛状細胞の浸潤と顕著なレチクリン線維症が明らかになりました。スメアでは HCL 細胞が見逃される可能性がある |
|
MDSからAMLへの進行 |
早期警告 |
生検では、塗抹標本上の豊富な芽球に先立って、未熟前駆体の異常な局在化 (ALIP) の出現と拡大を示すことができます。 |
|
リンパ腫骨髄関与 |
浸透パターンの判定 |
病期分類と治療の決定に重要な結節性、間質性、混合、散在性のパターンを区別します - |
|
転移性腫瘍 |
診断の確認 |
上皮腫瘍巣または転移性黒色腫がはっきりと示されています。 IHC がプライマリサイトを特定 |
(5) 「ドライタップ」の鑑別診断 - 生検のかけがえのない役割
「ドライタップ」とは、吸引針が骨髄腔に明らかに入っているが、繰り返し試行しても液体が得られないことと定義されます。一般的な原因と生検の診断価値:
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タップのドライの原因 |
生検所見 |
診断上の意義 |
|---|---|---|
|
骨髄線維症 |
豊富なレチクリン繊維。コラーゲンで満たされた骨髄腔 |
PMFまたは続発性骨髄線維症を確認します |
|
広範な悪性腫瘍の浸潤 |
骨髄腔には転移性癌腫または黒色腫細胞が詰まっており、正常な造血が妨げられています。 |
転移源を特定します(IHCが必要) |
|
極度の白血病性細胞過剰症 |
骨髄腔はほぼ完全に高密度の白血病細胞で満たされています。非常に高い粘度 |
AML/ALLを確認します(得られた微量塗抹標本と組み合わせて) |
|
骨髄壊死 |
組織全体にわたる非晶質の好酸性物質と核破片 |
重度の感染症、DIC、または腫瘍溶解を示唆します |
|
技術的要因 |
組織学的に正常な造血 |
病理学的原因を除外します。別の部位で吸引を繰り返す |
V. 比較された制限事項 - の詳細な分析
5.1 骨髄吸引の限界
(1) 自然構造の破壊 - 「携帯電話のソーシャルネットワーク」の喪失
吸引により骨髄組織が単一細胞懸濁液に分散されます。-これにより個々の細胞の検査が容易になりますが、細胞間の空間関係情報が完全に失われる、 含む:
芽球がクラスター化されているかどうかを判断できない(ALIP現象)
レチクリン線維の増殖を評価できない
造血ゾーンと脂肪ゾーンの境界を区別できない
この情報はまさに、MDS と骨髄線維症を診断する際に最も重要なものです。
(2) 正弦波希釈 - 「水薄化」のリスク
最も経験豊富な手であっても、吸引標本には必然的にある程度の正弦波状の血液が含まれます。研究によると、およそ日常的な骨髄吸引塗抹標本の細胞の 10% ~ 30% は正弦波希釈に由来します。この希釈効果は、以下の場合に特に顕著です。
Over-aspiration (>1ml)
過度に急速な吸引
重度の脾機能亢進症(正弦波流の加速)のある患者
本質的に低細胞性の骨髄 (正常細胞が少なく、希釈率が高い)
その結果、芽球の割合が過小評価され、高リスクの MDS を低リスクとして誤分類したり、AML の診断を完全に見逃したりする可能性があります。{0}
(3) ドライタップ - 審査不合格の「行き止まり」
上で説明したように、ドライタップが発生すると、吸引によって有効な検体が得られません。その後の生検がなければ、患者は長期にわたる診断ギャップに直面し、場合によっては再手術による追加の苦痛に直面することになります。
5.2 骨髄生検の限界
(1) 細胞の種類の識別の困難 - 「群衆の中での顔面失明」
厚さ 3 ~ 5 μm の組織切片では、核が垂直に重なり、細胞質が圧縮され、次のような結果が生じます。
骨髄芽球と単芽球の区別が難しい(塗抹標本のPOX染色によりこれが解決されます)
赤血球前駆細胞とリンパ球を区別できない場合がある
微小巨核球の同定は極めて困難
したがって、生検では「ここには多くの高密度の細胞がある」ことがわかりますが、それらの細胞が実際に何であるかを正確に伝えることはできません.
(2) 細胞内の微細構造の可視化が限定的 - 「ピクセル解像度が不十分」
処理ステップ - の固定 (ホルマリン)、脱灰 (酸性環境)、および包埋 (加熱パラフィン) - により、ある程度の細胞の収縮と歪みが発生します。
核小体が不明瞭になったり、消失したりすることがある
細胞質顆粒が溶解または位置を移動する可能性がある
アウアー桿体 (AML の特徴) を断面で特定するのは非常に困難です
塗抹標本では、固定したばかりの細胞や生きている細胞に近い細胞で、これらの微細な構造がはっきりと見えます。{0}}
(3) 細胞化学的染色の定量化の困難さ - 「定性的だが定量的ではない」
前述したように、生検切片の酵素活性と抗原保存は処理によって影響を受けます。細胞化学的染色の結果は、ほとんどが半定量的(例、「陽性」または「弱陽性」)であり、塗抹標本で達成できる正確なパーセンテージ値が不足しています。-これは、急性白血病の正確なサブタイピングにおける明らかな欠点です。
VI.臨床上の意思決定における補完的な関係-決定- ガイドラインから実践へ
6.1 主要なガイドラインからの推奨事項
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ガイドラインのソース |
おすすめ |
|---|---|
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WHO による血リンパ腫の分類 (2016/2022) |
MDS、MPN、AMLなどの場合、吸引と生検を同時に行うが推奨されます。組み合わせて使用すると、診断精度が 15% ~ 25% 向上します |
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NCCNデータシートガイドライン |
MDSの初期診断では、芽球率、線維化の程度、およびALIPを評価するために骨髄生検が必須です |
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再生不良性貧血に関する中国の専門家の合意 |
再生不良性貧血の診断には生検が不可欠です。スミアだけでは代用できない |
|
ELN AML ガイドライン |
吸引物塗抹標本は AML の診断と分類の中心です。生検は補足として機能します(特に線維症、血管新生、およびMRD評価の場合) |
6.2 標準化された「1 つの穿刺、1 つの生検」戦略
主要な国際血液学センターは、次の戦略を広く採用しています。単一麻酔、単一穿刺部位 (上後腸骨棘)、連続吸引とその後の生検:
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ステップ |
注文 |
理論的根拠 |
|---|---|---|
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ステップ1 |
最初に吸引を実行します |
最初に生検を実行すると、局所的な出血や線維症が発生し、その後の吸引の成功率が低下する可能性があります。 |
|
ステップ2 |
2番目に生検を実行する |
吸引による変化は生検(組織構造を評価します。少量の出血は全体的な評価には影響しません)に最小限の影響を与えます。 |
|
ステップ3 |
同じ穿刺部位 |
患者の不快感を軽減します。両方の標本は同じ解剖学的位置から採取されており、直接比較できます。 |
6.3 疾患-固有の選択戦略
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臨床シナリオ |
一次試験 |
二次/補助 |
理論的根拠 |
|---|---|---|---|
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新たに診断された急性白血病 |
吸引塗抹標本 |
生検(オプション) |
FAB 分類と免疫表現型検査に十分な塗抹標本。線維症/血管新生のための生検 |
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骨髄線維症の疑い |
生検 |
スメア(補助) |
生検は唯一の決定的な診断手段です |
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MDSの疑い |
両方同時に |
- |
WHOの基準では両方が必要です |
|
再生不良性貧血 |
生検 |
スメア(補助) |
脂肪置換の評価が診断の鍵となります |
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リンパ腫の病期分類 |
生検 |
スメア(補助) |
生検では浸潤パターンが示されます。スミアは病巣の関与を見逃す可能性がある |
|
多発性骨髄腫 |
両方同時に |
- |
形質細胞の形態を調べる塗抹標本。形質細胞のクラスタリングと線維症のための生検 |
|
転移がんの精密検査 |
生検 |
スメア(補助) |
生検の IHC により原発部位が特定されます。スメアでは腫瘍細胞が時々しか明らかにされない |
6.4 典型的なケースからの洞察
場合: 男性、68 歳、進行性の疲労と脾腫。 CBC: Hb 82 g/L、WBC 4.2×10⁹/L、PLT 58×10⁹/L。周囲の塗抹標本には涙滴細胞が時々見られます。
願望だけ: わずかに希釈された検体が得られる可能性があり、「異常細胞がほとんどない低細胞性」- を示すため、確定診断には不十分です。 「低細胞性MDS」と誤診される可能性があります。
生検のみ: 顕著な線維化とクラスター化した芽球が示され、PMF が示唆されますが、芽球を正確に分類することは不可能です。
組み合わせた: 塗抹標本は、未熟な骨髄細胞による左シフトした顆粒球形成を示しています。-生検では、MF-2 線維症、ALIP 陽性、巨核球の形態異常が示されています - 総合的な診断:MDS の特徴を伴う原発性骨髄線維症 (前線維化/初期段階)、その後の治療のための正確な基礎を提供します。








